Basic Considerations for Bioluminescence Resonance Energy Transfer (BRET) Assays…
PDF | 322.0 Ko
Télécharger maintenantFondamentalement, toute protéine qui exerce une action, un effet ou une influence quelconque sur une autre protéine interagit avec cette dernière. Cependant, dans le domaine des sciences de la vie, le terme d'interaction protéine-protéine (IPP) est utilisé de manière plus spécifique :
Les interactions protéine-protéine peuvent être classées de plusieurs façons (selon Acuner-Ozbabacan et al. 2011):
La majorité des processus cellulaires sont régulés par les IPP transitoires, et une grande partie de la recherche sur les IPP se concentre donc sur ce type d'interaction.
Il existe des dizaines de méthodes pour étudier la PPI, et chacune présente plusieurs avantages et inconvénients, par exemple
En raison du grand nombre de faux positifs et négatifs que la plupart des méthodes produisent, il est généralement nécessaire de confirmer chaque interaction en utilisant 2 ou 3 méthodes différentes.
La plupart des méthodes appartiennent à l'un des trois groupes de méthodes suivants : in silico, in vitro et in vivo. (Srinivasa Rao et al. 2013):
Les méthodes in silico utilisent des modèles informatiques pour prédire les interactions protéine-protéine. Elles comprennent des approches basées sur les séquences, sur les structures, la proximité des chromosomes, la fusion des gènes, l'hybride in silico 2, l'arbre miroir, l'arbre phylogénétique et les approches basées sur l'expression des gènes.
Les méthodes in vitro sont réalisées dans un environnement contrôlé à l'extérieur d'un organisme vivant. Les méthodes in vitro, utilisées pour la détection des IPP, comprennent la purification par affinité en tandem, la chromatographie d'affinité, la coimmunoprécipitation, les réseaux de protéines, la complémentation des fragments de protéines, l'affichage des phages, la cristallographie aux rayons X et la spectroscopie RMN. Dans certains d'entre eux (par exemple, la coimmunoprécipitation), l'interaction a lieu in vivo, mais elle est fixée et détectée après la mort de la cellule ou de l'organisme, et est donc parfois qualifiée de méthode ex vivo.
Les méthodes in vivo sont réalisées dans des cellules ou des organismes vivants. Le grand avantage des méthodes in vivo est qu'elles préservent le milieu naturel dans lequel l'interaction a lieu. En outre, certaines d'entre elles, comme le FRET, sont réversibles et peuvent être utilisées pour quantifier les interactions protéine-protéine de manière dynamique, ce qui est très avantageux. Suivez le lien ci-dessous pour plus d'informations sur ce type de méthodes.
Nombre des méthodes in vivo mentionnées ci-dessus utilisent des techniques fluorescentes ou luminescentes. Ainsi, des instruments capables de mesurer la fluorescence et/ou la luminescence sont nécessaires pour les utiliser. De nombreux instruments différents peuvent être utilisés pour ce type de mesures, notamment des lecteurs de microplaques, des microscopes à fluorescence, des systèmes d'imagerie in vivo, etc. Chaque instrument est différent en termes de performance, de flexibilité, de débit, de taille de l'échantillon et, surtout, de techniques d'étude des interactions protéine-protéine qu'il est capable d'effectuer. Suivez le lien ci-dessous pour plus d'informations sur les instruments destinés à cette application.
Basic Considerations for Bioluminescence Resonance Energy Transfer (BRET) Assays…
PDF | 322.0 Ko
Télécharger maintenantBioluminescence Resonance Energy Transfer (BRET)-based studies of receptor…
PDF | 334.9 Ko
Télécharger maintenantA Functional BRET Assay for 7TM Receptors Using the Mithras LB 940 Multimode…
PDF | 312.0 Ko
Télécharger maintenantBioluminescence Resonance Energy Transfer (BRET) as a means of monitoring…
PDF | 403.5 Ko
Télécharger maintenantComparison of filter sets for BRET1 assays: ß-arrestin2 (ßARR2) recruitment to…
PDF | 187.6 Ko
Télécharger maintenantFRET as a Tool to Study G-protein Coupled Receptor Oligomerization in HEK Cells.
PDF | 397.9 Ko
Télécharger maintenantCharacterization of the interaction between recombinant estrogen receptor alpha…
PDF | 312.6 Ko
Télécharger maintenantIn this Application Note results confirm that Tristar Multimode Readers are…
PDF | 375.3 Ko
Télécharger maintenantPromega NanoBRET™ protein:protein interaction system with the MITHRAS² Multimode…
PDF | 395.5 Ko
Télécharger maintenantPromega NanoBRET™ protein:protein interaction system with the TriStar² S…
PDF | 396.4 Ko
Télécharger maintenantBasic Considerations for Bioluminescence Resonance Energy Transfer (BRET) Assays…
PDF | 322.0 Ko
Télécharger maintenantBioluminescence Resonance Energy Transfer (BRET)-based studies of receptor…
PDF | 334.9 Ko
Télécharger maintenantA Functional BRET Assay for 7TM Receptors Using the Mithras LB 940 Multimode…
PDF | 312.0 Ko
Télécharger maintenantBioluminescence Resonance Energy Transfer (BRET) as a means of monitoring…
PDF | 403.5 Ko
Télécharger maintenantComparison of filter sets for BRET1 assays: ß-arrestin2 (ßARR2) recruitment to…
PDF | 187.6 Ko
Télécharger maintenantFRET as a Tool to Study G-protein Coupled Receptor Oligomerization in HEK Cells.
PDF | 397.9 Ko
Télécharger maintenantCharacterization of the interaction between recombinant estrogen receptor alpha…
PDF | 312.6 Ko
Télécharger maintenantIn this Application Note results confirm that Tristar Multimode Readers are…
PDF | 375.3 Ko
Télécharger maintenantPromega NanoBRET™ protein:protein interaction system with the MITHRAS² Multimode…
PDF | 395.5 Ko
Télécharger maintenantPromega NanoBRET™ protein:protein interaction system with the TriStar² S…
PDF | 396.4 Ko
Télécharger maintenant